ВПЛИВ БІОЛОГІЧНО АКТИВНИХ РЕЧОВИН ВІВСА ТА ЛЮЦЕРНИ НА ЖИРНОКИСЛОТНИЙ СКЛАД М’ЯСА ГУСЕЙ ПРИ ЗБЕРІГАННІ
Анотація
Стаття розкриває результати дослідження впливу біологічно активних речовин вівса та люцерни на жирнокислотний склад м'яса гусей породи «Легарт Датський» під час його зберігання. Актуальність дослідження обумовлена як постійно зростаючою популярністю м'яса птиці на світовому ринку, так і необхідністю адаптації до стратегії ЄС «Від ферми до виделки», яка акцентує увагу на збалансованому, сталому та екологічно чистому виробництві продуктів харчування. Аналіз літературних джерел засвідчив, що біологічно активні речовини рослин можуть покращити якість отримуваного м’яса і сприяти її збереженню при технологічній обробці. Основною метою даного дослідження є встановлення впливу застосування біологічно активних речовин вівса посівного (Avena Sativa) та люцерни (Medicago sativa) в раціоні гусей на процес перекисного окиснення ліпідів та жирнокислотний склад отриманого м'яса при низькотемпературному зберіганні. Об’єктом дослідження обрані гуси породи Легарт Датський. М'ясо цих гусей дієтичне, оскільки жир накопичується переважно у підшкірному шарі. Скоростиглість і висока конверсія корму робить цих гусей придатними для реалізації у ранньому забійному віці. Через зазначені особливості гуси породи Легарт Датський є перспективними для промислового виробництва. В результаті дослідження було визначено, що додавання домішки вівса та люцерни в раціоні гусей призводить до покращення жирнокислотного складу отримуваного м’яса, а саме збільшується вміст ω3-жирних кислот. На 90-ту добу низькотемпературного зберігання також встановлено підвищення вмісту цих кислот в дослідних групах. За дії біологічно активних речовин вівса та люцерни в зразках м’яса спостерігалось подовження стану прооксидантно-антиоксидантної рівноваги. Результати дослідження можуть мати практичне застосування в галузі виробництва та зберігання м’яса і м'ясопродуктів, сприяти покращенню якості м'яса та його поживних властивостей.
Посилання
Іонов І. А. Критерії та методи контролю метаболізму в організмі тварин та птахів. Харків, 2011. 376 с.
Ковальов С. В. Дослідження органічних кислот трави люцерни мінливої. Український біофармацевтичний журнал. 2017. № 3 (50). С. 52–55. DOI: https://doi.org/10.24959/ubphj.17.118
Danchenko O. O. (2021) Effect of extract from common oat on the antioxidant activity and fatty acid composition of the muscular tissues of geese. Regulatory Mechanisms in Biosystems. Vol. 12, № 2. P. 307–314. DOI: https://doi.org/10.15421/022141
Everitt B. S. (2003) Handbook of Statistical Analyses Using SPSS. Chapman & Hall/CRC, 368.
Kim I.-S. (2021) Multiple antioxidative and bioactive molecules of oats (avena sativa L.) in human health. Antioxidants. Vol. 10, № 9. P. 1454. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox10091454
Kwiecień M. (2021) Effects of dietary alfalfa protein concentrate on lipid metabolism and antioxidative status serum, and composition and fatty acids profile, antioxidative status and dietetic value of the muscles in broiler. Poultry Science. Vol. 100, № 4. P. 1–11. DOI: https://doi.org/10.1016/j.psj.2020.12.071
Kushch M. M. (2019) Morphological features of the jejunum and ileum of the middle and heavy goose breeds. Ukrainian Journal of Ecology. Vol. 9, № 4. P. 690–694. DOI: https://doi.org/10.15421/2019_811
Muzolf-Panek M. (2019) Oxidative and microbiological stability of raw ground pork during chilled storage as affected by Plant extracts. International Journal of Food Properties. Vol. 22, № 1. P. 111–129. DOI: https://doi.org/10.1080/10942912.2019.1579834
OECD-FAO Agricultural outlook, 2023-2032 (2023) OECD Publishing. DOI: https://doi.org/10.1787/08801ab7-en
Orkusz A. (2021) The assessment of changes in the fatty acid profile and dietary indicators depending on the storage conditions of goose meat. Molecules. Vol. 26, № 17. P. 5122. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26175122.
Palmer F. B. (1971) The extraction of acidic phospholipids in organic solvent mixtures containing water. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Lipids and Lipid Metabolism. Vol. 231, № 1. P. 134–144. DOI: https://doi.org/10.1016/0005-2760(71)90261-x
Patel A. (2022) Futuristic food fortification with a balanced ratio of dietary ω-3/ω-6 omega fatty acids for the prevention of lifestyle diseases. Trends in Food Science & Technology. № 120. P. 140–153. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2022.01.006
Shen M. M. (2019) Effects of bamboo leaf extract on growth performance, meat quality, and meat oxidative stability in broiler chickens. Poultry Science. Vol. 98, № 12. P. 6787–6796. DOI: https://doi.org/10.3382/ps/pez404
Sun Y., (2023) Mixed oats and alfalfa improved the antioxidant activity of mutton and the performance of goats by affecting intestinal microbiota. Frontiers in Microbiology. Vol. 13. P. 1–10. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1056315
Wang S. (2013) Optimization of enzyme-assisted extraction of polysaccharides from alfalfa and its antioxidant activity. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 62. P. 387–396. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2013.09.029
Ionov I. A. (2011) Kriterii i metody kontrolja metabolizma v organizme zhivotnyh i ptic. Harkov, 376.
Kovalov S. V. (2017) Doslidzhennya organichnyx kyslot travy lyucerny minlyvoyi. Ukrayinskyj biofarmacevtychnyj zhurnal Vol. 3 (50), pp. 52–55. DOI: https://doi.org/10.24959/ubphj.17.118
Danchenko O. O. (2021) Effect of extract from common oat on the antioxidant activity and fatty acid composition of the muscular tissues of geese. Regulatory Mechanisms in Biosystems. Vol. 12, no 2, pp. 307–314. DOI: https://doi.org/10.15421/022141
Everitt B. S. (2003) Handbook of Statistical Analyses Using SPSS. Chapman & Hall/CRC, 368.
Kim I.-S. (2021) Multiple antioxidative and bioactive molecules of oats (avena sativa L.) in human health. Antioxidants. Vol. 10, no 9, 1454. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox10091454
Kwiecień M. (2021) Effects of dietary alfalfa protein concentrate on lipid metabolism and antioxidative status serum, and composition and fatty acids profile, antioxidative status and dietetic value of the muscles in broiler. Poultry Science. Vol. 100, no 4, pp. 1–11. DOI: https://doi.org/10.1016/j.psj.2020.12.071
Kushch M. M. (2019) Morphological features of the jejunum and ileum of the middle and heavy goose breeds. Ukrainian Journal of Ecology. Vol. 9, no 4, pp. 690–694. DOI: https://doi.org/10.15421/2019_811
Muzolf-Panek M. (2019) Oxidative and microbiological stability of raw ground pork during chilled storage as affected by Plant extracts. International Journal of Food Properties. Vol. 22, no 1, pp. 111–129. DOI: https://doi.org/10.1080/10942912.2019.1579834
OECD-FAO Agricultural outlook, 2023-2032 (2023). OECD Publishing. DOI: https://doi.org/10.1787/08801ab7-en
Orkusz A. (2021) The assessment of changes in the fatty acid profile and dietary indicators depending on the storage conditions of goose meat. Molecules. Vol. 26, no 17, 5122. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26175122.
Palmer F. B. (1971) The extraction of acidic phospholipids in organic solvent mixtures containing water. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Lipids and Lipid Metabolism. Vol. 231, no 1, pp. 134–144. DOI: https://doi.org/10.1016/0005-2760(71)90261-x
Patel A. (2022) Futuristic food fortification with a balanced ratio of dietary ω-3/ω-6 omega fatty acids for the prevention of lifestyle diseases. Trends in Food Science & Technology, no 120, pp. 140–153. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2022.01.006
Shen M. M. (2019) Effects of bamboo leaf extract on growth performance, meat quality, and meat oxidative stability in broiler chickens. Poultry Science. Vol. 98, no 12, pp. 6787–6796. DOI: https://doi.org/10.3382/ps/pez404
Sun Y. (2023) Mixed oats and alfalfa improved the antioxidant activity of mutton and the performance of goats by affecting intestinal microbiota. Frontiers in Microbiology, no 13, pp. 1–10. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1056315
Wang S. (2013) Optimization of enzyme-assisted extraction of polysaccharides from alfalfa and its antioxidant activity. International Journal of Biological Macromolecules, no 62, pp. 387–396. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2013.09.029